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3T3-L1细胞培养及经典“鸡尾酒”诱导攻略

时间:2023-11-02 14:58:02 浏览次数:2489

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流行性肥胖是近几年的一大健康挑战,肥胖促使一些心血管疾病如高血压、血栓等发病率增高,糖尿病则是以高血糖为特征的代谢性疾病,长期存在可导致各种组织,特别是眼、肾、心脏、血管、神经的慢性损害、功能障碍。3T3-L1细胞——小鼠胚胎成纤维细胞(前脂肪细胞)系具有向脂肪细胞分化的特性,被广泛用于研究糖尿病,肥胖症等。 

 

(图一)3T3-L1细胞形态 

 

(表一) 3T3-L1基础培养信息

细胞名称 3T3-L1(小鼠胚胎成纤维细胞)
来源 18 天左右胎龄的 Swiss 小鼠胚胎
生长方式 贴壁生长
细胞形态 成纤维细胞样
培养条件 95%空气 5%CO2 37℃
推荐营养体系 DMEM(abs9483)+10% NBCS(abs978)+1%P/S(abs9244
传代 0.25%Try(abs47014937)消化5-15min 1:3-1:4传代
冻存液配制 完全培养基+5%DMSO(abs9187)

 

培养小提示:
1、 Never allow culture to become completely confluent.!!!细胞汇合度达到70-80%时进行传代。
2、为了避免细胞聚团,在等待细胞消化的过程中,不要通过击打或摇晃瓶子来刺激细胞。难以消化的细胞可以放置在37℃。
3、正常培养(非脂肪诱导期)出现空泡时,请优先考虑环境压力。造成压力的原因包括培养基中缺乏谷氨酰胺、添加抗真菌药物、培养基中二氧化碳、碳酸氢钠浓度不当或培养基的营养物质耗尽。
4、使用胎牛血清可能会造成细胞分化!!!  

 

3T3-L1成脂诱导“鸡尾酒”策略 (图二)3T3-L1细胞(正常)和3T3-L1成脂分化后(对照)

一般认为,细胞的增值和分化呈负相关,细胞开启分化必先退出分裂增值周期,常用的方法就是让其生长至融合期,出现接触抑制。脂肪生成是一个将碳水化合物和其他底物转化为脂肪酸,然后作为TAGs(甘油三酯)储存起来的过程。
经典“鸡尾酒”法中,胰岛素样生长因子(IGF-1)激活有丝分裂原蛋白激酶途径诱导细胞分化、cAMP磷酸二酯酶抑制剂(IBMX)通过激活cAMP 依赖性蛋白激酶途径增强 CCAAT/增强子结合蛋白家族 (C/EBPs)、过氧化物酶体增殖物激活受体γ( PPARγ) 表达促进成脂分化、地塞米松促进C/EBPs的表达。

 

3T3-L1经典成脂诱导过程

诱导步骤:将融合后的3T3-L1(汇合度100%)细胞从DMEM生长培养基切换到含有0.5 mmol/L IBMX(abs817348)、10 mg/mL胰岛素和1μmol/L地塞米松的分化培养基中48h。然后将细胞维持在含有10%FBS和10 mg/mL胰岛素的DMEM培养基中48h,之后每隔一天更换常规新鲜培养基,一般第九天染色。

 

PS:不同产品活性纯度不同,浓度仅供参考,不同诱导方案略有差异,IBMX(abs817348)用DMSO溶解时需要超声破碎。

 

染色:油红O储存液与超纯水按 3:2 稀释混匀,过滤,避光静置后酒红色且无沉淀,现配现用,2h内用完。
用 PBS 磷酸缓冲液小心漂洗细胞三次,以2mL/孔(六孔板)的剂量加入4%多聚甲醛,室温固定40min,再用蒸馏水漂洗2次,每孔加入油红O工作液1mL,常温染色15min,蒸馏水漂洗至无残渣,蒸馏水漂洗后加入PBS镜下观察。

 

PS:清洗细胞时动摇要轻柔,防止脂滴脱落,油红O工作液一定要过滤至无沉淀,否则染色后有残渣且较难冲洗!!!

 

“鸡尾酒”诱导策略进击版
有研究者探索了葡萄糖浓度和诱导液2(含10mg/mL胰岛素的低糖培养基)的作用时间对3T3L1细胞成脂分化率的影响,结果显示,低糖培养基诱导时成熟脂肪细胞形成率明显增高,诱导液2作用时间为3d时,成熟脂肪细胞形成率明显高于其他组。 

 

注:文中图片来源于网络,仅供学习参考用

胞胞巴适本期推荐

货号 产品名称 规格
abs9483 DMEM高糖培养基(含 L-谷氨酰胺,含丙酮酸钠,不含HEPES) 500mL
abs978 新生牛血清(优级) 500mL
abs9244 青霉素-链霉素溶液(100×,双抗) 100mL
abs47014937 胰蛋白酶消化液(0.25%,含酚红) 100mL
abs9187 二甲基亚砜(细胞培养级) 50mL
abs817348 IBMX 25mg
abs9294 油红O染色液-改良型 3×20ml

 

参考文献
[1]    Ling HY, Wen GB, Feng SD, Tuo QH, Ou HS, Yao CH, Zhu BY, Gao ZP, Zhang L, Liao DF. MicroRNA-375 promotes 3T3-L1 adipocyte differentiation through modulation of extracellular signal-regulated kinase signalling. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2011 Apr;38(4):239-46. doi: 10.1111/j.1440-1681.2011.05493.x. PMID: 21291493; PMCID: PMC3086632.
[2]    [1]张轶博,钟悦,曾瑞霞.HAmLET诱导小鼠前脂肪细胞3T3-L1成脂分化[J].锦州医科大学学报,2022,43(04):14-19.DOI:10.13847/j.cnki.lnmu.2022.04.022.
[3]    [1]张晓琴. 优化3T3L1细胞成脂诱导模型并初步探讨miR-222-3p对脂肪生成的作用[D].湖北中医药大学,2020.DOI:10.27134/d.cnki.ghbzc.2020.000193.

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