1. c-Met的基本特性
c-Met(肝细胞生长因子受体)是一种受体酪氨酸激酶(RTK),由MET基因编码,主要参与细胞增殖、分化、运动、血管生成和上皮间质转化(EMT)等过程。c-Met的结构包括细胞外的配体结合域、跨膜区和细胞内的酪氨酸激酶域。
2. HGF/c-Met信号通路
c-Met的配体是肝细胞生长因子(HGF)。在正常生理条件下,HGF以旁分泌方式作用于表达c-Met的上皮细胞。HGF与c-Met结合后,激活酪氨酸激酶域,引发受体二聚化和磷酸化,进而激活下游信号通路,如PI3K-Akt、Ras-MAPK和STAT等。这些信号通路在细胞增殖、存活、迁移和侵袭中发挥重要作用。
图:HGF/c-Met Signaling 示意图
From:An overview of the c-MET signaling pathway.doi:10.1177/1758834011422556
3. c-Met的调节机制
c-Met的活性受到多种机制的调控,包括:
内吞作用与泛素化降解:HGF/c-Met复合物被内化后,通过溶酶体途径降解。E3泛素连接酶Cbl对c-Met进行多泛素化修饰,促进其降解。
磷酸化修饰:近膜区丝氨酸残基(Ser985)的磷酸化可抑制c-Met的酪氨酸自磷酸化,起到负反馈调节作用。
细胞酪氨酸磷酸酶(PTPs)的作用:PTPs通过去磷酸化调节c-Met的活性。
4. c-Met在癌症中的作用
c-Met的异常激活(如过表达或突变)与多种癌症的发生发展密切相关,包括肺癌、胃癌、结肠癌、乳腺癌、胰腺癌和卵巢癌等。c-Met/HGF轴的异常激活可促进肿瘤生长、血管生成和转移,因此c-Met成为重要的肿瘤靶向治疗靶点。
4.1 c-Met与肺癌:研究发现,在60%的NSCLC病例中发现c-MET过表达。Capmatinib和Tepotinib已获批用于MET外显子14跳跃突变的NSCLC患者,显著延长无进展生存期对于小细胞肺癌(SCLC),HGF/c-Met信号通路的激活导致肿瘤生长和细胞存活的增加。许多SCLC患者血浆HGF水平较高,这可能与MET基因扩增有关。
4.2 c-Met与乳腺癌:研究表明,HGF和c-Met常在侵袭性乳腺癌中高表达。多项研究均指出HGF/c-MET途径与乳腺癌进展相关,这表明开发抗c-Met抑制剂对于那些没有许多可用选择的患者具有重要意义,如基底样乳腺癌和三阴性乳腺癌。
4.3 c-Met与肾癌:在遗传性和散发性肾细胞癌(RCC)中发现了c-Met基因突变。具体来说,c-Met在林岛(VHL)综合征中过表达是由于低氧诱导因子HIF-1a上调,从而增强Met信号通路。
4.4 c-Met与头颈癌:头颈部鳞状细胞癌(HNSCC)患者HGF升高。c-Met基因在鼻咽癌淋巴结转移中高度表达。此外,c-Met表达与较差的预后和较低的总生存率相关。HGF/Met表达水平与晚期鼻咽癌生存期呈负相关。c-Met/HGF通路被认为是表皮生长因子受体(EGFR)靶向治疗获得性耐药的机制之一。
4.5 c-Met与胃肠道癌:在胃肠道癌症中,c-Met异常激活的原因有:基因的扩增和突变、上调(KRAS)、减少c-Met受体降解,配体非依赖激活以及HGF自分泌过表达,缺氧和炎症等。晚期肿瘤中的EGFR磷酸化诱导HGF独立的c-Met激活,磷酸化导致致癌活性发生。多项临床试验评估了c-Met抑制剂(如Volitinib、Rilotumumab)在胃癌中的应用,部分研究显示联合治疗可提高疗效。
4.6 c-Met与肝癌:肝细胞癌(HCC),HGF/c-Met通路在约50%的HCC中被激活,HGF通过旁分泌机制结合位于肝细胞细胞膜上的c-Met受体起作用。c-Met也受缺氧诱导因子1 (HIF-1)的诱导,一旦被激活,可诱导VEGF-a的表达,进一步促进肿瘤血管生成。
4.7 c-Met与中枢神经系统肿瘤:在原发性脑肿瘤中,HGF/c-Met信号通路促进不同通路的下游激活,如酪氨酸激酶Src磷酸化FAK,参与细胞运动和侵袭,以及PI3K,激活Akt/PKB促进细胞存活。HGF/c-Met通路促进Wnt/β-catenin和连接蛋白Sos,激活RAS/RAF/ERK/MAPK通路,从而促进细胞生长、迁移和转移。在胚胎性中枢神经系统肿瘤中,c-Met通过直接激活血管内皮生长因子和细胞侵袭,在促进新血管生成方面发挥着至关重要的作用。
5. c-Met靶向治疗策略
目前,针对c-Met的靶向治疗策略包括:
5.1 小分子抑制剂:通过抑制c-Met的酪氨酸激酶活性来阻断信号通路。
5.2 单克隆抗体和双特异性抗体:阻断HGF与c-Met的结合或直接靶向c-Met。
5.3 抗体药物偶联物(ADC):将细胞毒性药物与抗c-Met抗体结合,特异性地递送药物到肿瘤细胞。
5.4 CAR-T细胞和CAR-M细胞:通过改造T细胞或巨噬细胞表达嵌合抗原受体(CAR),靶向c-Met阳性肿瘤细胞。
6. HGF与c-Met蛋白
HGF Protein, Human 货号:UA040194
使用 4MBr-5 恒河猴上皮细胞在细胞增殖测定中检测。EC50<1ng/ml。
HGFR/c-MET His Tag Protein, Human 货号:UA010226
HGFR/c-MET His 蛋白,浓度为 2.0μg/mL(100μL/孔)可结合抗人 MET (Emibetuzumab),EC50 为 2.00-3.30ng/mL。
7.信号通路检测
例:Phospho c-Met,Total c-Met
THUNDER TR-FRET时间分辨荧光共振能量转移,检测技术灵敏度高,特异性好,重复性好,操作简单,仅需1~4h。
一种基于荧光共振能量转移(FRET,Fluorescence Resonance Energy Transfer)和时间分辨荧光(TRF, Time-Resolved Fluorescence)的技术,采用夹心法,检测胞内c-Met磷酸化水平和总c-Met水平。
图:THUNDER 磷酸化/总蛋白检测原理示意图
图:Phospho和Total c-Met相关数据
例:Phospho-ERK
图:Phospho ERK相关数据
8.c-Met-ADC 内化检测
1、基于毒素偶联的杀伤检测:通过将抗体与重组免疫毒素(如DT3C)偶联,利用抗体的内化能力将毒素带入细胞,通过检测细胞杀伤来评估抗体的内化效果。
DT3C作为一种重组蛋白,可以与抗体的Fc端高度亲和,当mAb-DT3C偶联物与细胞表面的抗原结合后,它们通过内吞作用被细胞内化。在细胞内,DT3C被弗林蛋白酶(furin protease)切割释放出具有毒性的白喉毒素催化结构域。这个催化结构域进入细胞质后,会导致延伸因子(EF)-2的ADP-核糖基化,抑制蛋白质翻译,最终导致细胞死亡。用于体外检测癌细胞对mAb的内化效率,是一种有效的工具。最终通过化学发光信号测定细胞内ATP含量,从而检测细胞活力或定量检测活细胞数目。
图:DT3C工作原理(图片来源于网络)
2、基于pH探针的内化检测:利用pH敏感的荧光探针标记抗体,当抗体被细胞内吞并进入酸性的内体或溶酶体时,荧光信号增强,从而可以评估内化效率。
这是一种新型荧光染料,当其周围环境pH值酸性增强时,它会显著增强荧光亮度。pH-sensitive lgG labeling reagents染料偶联物在细胞外不发出荧光,但在内化后在酸性pH环境下细胞中会发出明亮的绿色荧光。在中性和碱性pH值时,pH-sensitive lgG labeling染料发射荧光信号强度最低;随着酸化,pH-sensitive lgG labeling染料的发射荧光信号强度增加多达8倍(pH值为4时)。
图:UA BIOSCIENCE PH roder检测ADC内化结果示意图
GPRC5D ADC BMK偶联物,同型对照及阴性对照组,荧光信号仅在GPRC5D ADC BMK偶联物的GPRC5D阳性细胞中检测到,表明ADC特异性内化。
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