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肠道固有层免疫细胞分离制备指南

时间:2025-03-27 09:56:13
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1、实验前准备:


试剂准备


40% Percoll溶液配制:
Percoll 细胞分离液与 PBS 缓冲液(10×)按体积比 9:1 混合,配制等渗 100% Percoll 母液。用 100% Percoll 母液和 RPMI 1640/1×PBS 按体积比 4:6 混合,配制 40% 等渗 Percoll 溶液。

 

80% Percoll 溶液:
Percoll 细胞分离液与 PBS 缓冲液(10×)按体积比 9:1 混合,配制等渗 100% Percoll 母液。用 100% Percoll 母液和 RPMI 1640/1×PBS 按体积比 8:2 混合,配制 80% 等渗 Percoll 溶液。

 

2、肠道固有层免疫细胞分离步骤操作步骤:

 

1、颈椎脱臼法处死小鼠并固定在手术台上,75%酒精消毒小鼠腹部,于正中纵行剪开暴露腹腔;
2、如下图所示,在小鼠胃与十二指肠连接处剪断,一边分离小肠周围脂肪组织和肠系膜,一边拉出小肠,之后在小肠和盲肠连接处剪断,从而分离出小肠。

 


小鼠肠道组织解剖图


3、10 cm 培养皿中加入5 mL 4°C 预冷的 PBS,将步骤 2 中的小肠放入培养皿润洗,使用镊子和剪刀依次去除脂肪组织和派伊尔结。
 

小鼠派伊尔结去除操作图


A. 去除表面脂肪和肠系膜等组织的小肠,红色箭头指示派氏结(平均每只小鼠有 6-9 个派氏结);
B. 剪去派氏结的操作示意图;
C. 去除派氏结后的小肠,红框是所有剪下来的所有派氏结。


小鼠派伊尔结(Peyer's patches,PPs)是小鼠肠道黏膜免疫系统的重要组成部分,主要分布在小鼠小肠的下部,即远端空肠和回肠,与小鼠固有层免疫细胞的组成和功能有显著差异,在分离小鼠肠道免疫细胞时,去除派伊尔结是为了确保获得更纯净、更具代表性的目标细胞群体,从而提高实验结果的可靠性。
4、将小肠切成 4 段,用剪刀纵向剪开小肠(不必沿着肠系膜方向),暴露出肠内容物,轻轻地将肠内容物从粘膜表面刮除;
5、将小肠转移到含有 10 mL HBSS + 2% FBS 的 50 mL 离心管中,剧烈涡旋 10-20 秒;
6、用镊子取出小肠重复清洗 2 次;


7、将清洗过的肠组织,剪碎成 0.5 cm 的小片段,将组织块(100-200 mg)转移到 2 mL 圆底管中,加入 1 mL 小鼠肠道组织解离液(abs50093),37 °C 水平摇床轻轻摇晃孵育 60 min(根据组织糜烂状态适当延长孵育时间);
8、从水平摇床中取出圆底管,剧烈涡旋 10-20 秒,通过 70 μm 细胞筛网(abs7232)过滤,用 10 mL PBS 冲洗细胞筛网;
9、收集含有细胞的滤液到 50 mL 管中,20 °C 下 400 g 离心 5 min,弃上清液,用 4 mL 40% percoll(abs9102)重悬细胞沉淀并转移到 15 mL 离心管;10、吸取 2.5 mL 80% percoll 深入到 15 mL 离心管底部,试管稍微倾斜,将 4 mL 40% percoll 与细胞的混合液沿着管壁缓慢加入离心管,覆盖在 80% percoll 溶液的顶部形成密度梯度;


 注意:不要破坏 80% percoll 和 40% percoll 与细胞的悬浮液的分界面,40% 和 80% percoll 现配现用。

 

11、800 g 20 °C 离心 20 min,升速(ACC)1,降速(DEC)1;

 


Percoll 分离组织免疫细胞示意图

分离图片参考自文献 DOI: 10.21769/BioProtoc.1010327


12、离心结束后,吸取中间白膜层免疫细胞至新的 15 mL 离心管中,加入 3 倍体积 4°C 预冷 PBS,上下颠倒混匀,4 °C 下 400 g 离心 5 min,弃上清;
13、按照步骤 12 重复清洗一次,弃上清得到肠道固有层淋巴细胞;
14、细胞染色缓冲液(abs9475)重悬细胞沉淀,并调整细胞浓度至 5-10×106 cells/mL,将 100 μL/管的细胞悬液分配到 12×75 mm 的流式管(abs7303)中用于后续实验操作。

 

3、流式实验结果图

 

 

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用途 品名 货号 规格
保存组织 组织保存液 abs9474 100mL
消化组织酶 小鼠肠道组织解离试剂盒 abs50093 25T
富集细胞 细胞分离液 abs9102 100mL
筛网 70um 细胞筛网 abs7232 100 个
流式管 5mL 流式管(无菌无酶,带帽) abs7303 500 个
染色缓冲液 细胞染色缓冲液 abs9475 500mL

 

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