【小优细节君】HIF-1α老是空白条带，究竟为何？

很多刚接触HIF-1α的同学们很容易碰到一个问题，就是做的Western老是空白条带，什么都没有。今天我们就带着这个问题，一起深入了解下这个缺氧大明星。

发现     

美国癌症学家威廉·凯林(William G. Kaelin, Jr.)
英国医学家彼得·拉特克利夫(Sir Peter J. Ratcliffe)
美国医学家格雷格·塞门扎(Gregg L. Semenza)

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HIF-1的发现得感谢上面三位科学家。我们一直知道氧气的重要性，却不清楚细胞是如何适应氧气水平的变化。这三位科学家为大家揭示了细胞水平的分子机理以及核心蛋白HIF-1，从而获得诺贝尔生理学或医学奖。

简单描述下发现的过程：首先在缺氧情况下，发现细胞内的促红细胞生成素(Erythropoietin, EPO)会大量表达，然后发现了增强EPO表达的关键区域——缺氧反应元件(Hypoxia Response Element，HRE)。最后发现与HRE特异性结合的蛋白——缺氧诱导因子(Hypoxia-Inducible Factor, HIF）。

结构

HIF-1结构上是一个异源二聚体，其中一个命名为HIF-1α，另外一个，命名为HIF-1β。HIF-1β又叫芳香烃受体核转运因子(Aryl Hydrocarbon Receptor Nuclear Translocator，ARNT)。研究发现，HIF-1β对氧气含量的变化并不敏感，所以我们的主角就是HIF-1α了。

HIF家族结构域示意图

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HIF家族有共同的两个结构域：一个是紫色部分的碱性螺旋-环-螺旋结构域(Basic Helix-Loop-Helix, bHLH)，一个是绿色部分的Per-ARNT-Sim结构域(Periodicity-ARNT-Single-minded，PAS）。这两个结构域是 HIF-1α 和 HIF-1β 亚基形成异二聚体所必需的。

蓝色是氧依赖降解结构域(Oxygen-Dependent Degradation, ODD)，是HIF1受氧调控的关键部位，这个我们下部分细讲。N-TAD和C-TAD是两个反式激活结构域(transactivation domain, TAD)，N-TAD位于ODD结构域，C-TAD 可以和CBP/p300 等相互作用共同激活下游基因。这两个结构域共同负责HIF-1α转录活性。

HIF-2α在 HIF-1α被发现不久后就被克隆出来了。HIF-2α与HIF-1α有 48% 的氨基酸序列是相同的，功能也类似，可以与HIF-1β形成异二聚体并结合HRE。不过与HIF-1α的普遍表达不同的是，HIF-2α主要表达在肺，内皮，颈动脉中。

后来发现的HIF-3α也在多种组织中表达，同样与 HIF-1β 形成异二聚体并结合HRE。不过目前HIF-1α 和 HIF-2α研究更加广泛，而HIF-3α和其他HIF亚型研究较少，还有待大家去研究。

降解

为什么HIF-1α Western难做呢，主要就是因为常氧快速降解，还没等你检测，就已经没有了。

HIF-1α信号通路

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我们一起来看上面的通路图，在常氧条件下，HIF-1α 会发生脯氨酸羟基化（402和564位点都是脯氨酸），细心的同学还可以看到图中K532也同时发生了乙酰化。这时冯·希佩尔-林道肿瘤抑制蛋白(von Hippel-Lindau tumor suppressor protein，VHL) 就会结合到HIF-1α，发生泛素化，形成E3泛素连接酶复合体。随后发生蛋白酶体降解。

而在右边的缺氧条件下，HIF-1α没有了VHL这个蛋白的限制，不发生泛素化降解，从而不断积累进入细胞核，调控下游基因的表达。如果我们使用一些羟化酶抑制剂，例如DFO去铁胺和氯化钴等，同样可以阻断HIF-1α的降解，使HIF-1α的水平上调。

还需要注意的是，HIF-1α的降解不是只通过VHL调控。研究报道还有许多其他蛋白可以影响 HIF-1α的泛素化和稳定性。例如P53可以通过MDM2来降解HIF-1α；Jab1又可以增加HIF-1α的表达水平。此外，VHL 也与 HIF-1信号通路的其他蛋白有相互作用，因此VHL调节的不仅只是HIF-1α 稳定性。生物体如此复杂，大部分蛋白调控都是交错进行的。

常见问题

1.无条带

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做HIF-1α蛋白最常见的问题就是无条带。在我们的咨询中，无条带的比例占到了80%。

碰到无条带的情况，首先要确认你的样本是否表达或高表达HIF-1α，是否使用低氧诱导，低氧诱导是否成功，这些都可以通过上下游蛋白表达变化以及功能实验去综合判断的。

有的同学说我做的不是低氧诱导，是药物诱导，那么最好在旁边添加一个低氧诱导的阳性对照来排查问题。

小优细节君建议
阳性对照推荐0.5%氧气培养24h。如果没有低氧培养箱，建议使用氯化钴(100µM，4h)或者DMOG(1mM，6h)来处理细胞。

如果样本表达和低氧诱导都没有问题，还有一个关键点需要注意，就是蛋白提取操作是否成功。因为HIF-1α低氧诱导后主要在细胞核累积，所以提取蛋白时使用的裂解液和方法要充分裂解核蛋白。

建议使用裂解效果强的RIPA裂解液或者SDS裂解液，保证可以裂解核膜。裂解完增加超声步骤，完全破碎细胞膜和细胞核膜，打断DNA，充分释放蛋白，同时可以增加样本的均一性。建议每次超5～10S，间隔20S，共三个循环。超声时需要根样本体积及所用的探头大小调整超声功率，尽量保证在超声过程中样本不起泡，超声后样本变得澄清。

如果有同学说实验室没有超声仪器怎么办，可以使用1ml注射器，来回抽进打出5～10次，到没有阻力为止。做Western时也可以做一下核内参。

2. 条带位置不对

HIF-1α理论分子量在93KD，实际上由于蛋白的多种修饰，尤其是泛素化修饰，呈现出来的分子量在110-120KD左右。我们之前就碰到有同学只裁窄窄的两个marker之间的部分，很有可能将目的蛋白丢失。

Uniprot上HIF-1α的修饰

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小优细节君建议
在跑HIF-1α一定要把膜裁宽一些，将70-150KD蛋白全部转上去。这里还需要注意，预染marker由于偶联了染料，出现5-10KD迁移偏差是很正常的现象。如果样本条带趋势符合造模，且条带位置和阳性对照一致，只是条带出现在了130 KD位置，我们可以基本确认是目的条带。

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3. 为什么HIF-1β/ARNT能做出来，HIF-1α做不出来？

这个问题其实仔细看过上文的同学们是可以找到答案的。因为HIF-1β对氧气含量的变化并不敏感，也就是说正常的细胞组织是可以检测出HIF-1β的。我们看下图，同样的HepG2细胞，只有CoCl2处理后才能检测到HIF-1α，而未处理的HepG2就可以检测到HIF-1β。

HepG2细胞检测HIF-1α和HIF-1β

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小优细节君建议
如果想通过其他亚型的表达情况来确认HIF-1α表达，建议可以做下HIF-2α。这两个蛋白比较相近，可以说明一定问题。

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参考文献：
1. Qingdong Ke, Max Costa. Hypoxia-inducible factor-1 (HIF-1). Mol Pharmacol. 2006 Nov;70(5):1469-80.
2. G L Semenza. HIF-1 and mechanisms of hypoxia sensing. Curr Opin Cell Biol. 2001 Apr;13(2):167-71.
3. Johannes Schödel, Peter J Ratcliffe. Mechanisms of hypoxia signalling: new implications for nephrology. Nat Rev Nephrol. 2019 Oct;15(10):641-659.