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5.4 外泌体DNA提取

| 6.1 外泌体可视化(示踪)

图6 样本中纯化外泌体和DNA 流程
△点击放大图片

实验步骤

  • 1
  • 2
  • 3
  • 4
  • 1

    A)从血浆或血清中分离外泌体

    1、在冰上解冻500µL的血浆或血清。如果样品体积小于500µL,则在样品解冻后使用1xPBS将样品体积达到500µL。注:抽血后溶解和/或溶解的白细胞可能释放细胞gDNA。在处理血液样本时,应采取预防措施以稳定白细胞,最大限度地减少样本中细胞gDNA污染
    2、3000xg离心15分钟,去除细胞、凋亡小体和细胞碎片并收集上清液(可选:可将上清液通过0.22µm过滤器,去除样品中大于220 nm的微粒)
    3、涡旋试剂A溶液,在步骤2的上清液中加入12µL试剂A,涡旋混合10秒,55⁰C孵育10分钟。注:使用试剂A处理不仅可以减少非外泌体蛋白污染物的数量,还可以减少一些外泌体表面标记物的数量和/或大小
    4、让混合物冷却到室温。将步骤3中的混合物与128µL的ExoQuick混合
    5、搅拌均匀
    6、在4⁰C处放置30min
    7. 13000xg离心机,持续10分钟
    8、取出上清液,将其与沉淀分离。保存上清液(见下文B环节),继续使用外泌体沉淀物进行下一步操作
    9、外泌体沉淀物在500µL 1xPBS重悬
    10、选中后外泌体可以通过以下步骤提取外泌体DNA(见C环节)

  • 2

    B)无细胞循环DNA(cfDNA)的分离

    11、将35 mL纯乙醇(99-100%)加入15 mL浓缩洗涤液中,制备50 mL含约70%乙醇和30%洗涤液的工作洗涤液(工作洗涤液应密封严密,可在15-25℃保存)。工作洗涤液将在下面的C环节中使用
    12、将1000µL的DNA结合缓冲液加入A环节的上清液中(约630µL),通过涡旋10秒混合
    13、取步骤12的混合物600µL转移到collection tube中的spin column中。3300xg离心2分钟。去除液体,用相同的collection tube重新组装spin column
    14、重复步骤13,将600µL的剩余混合物从步骤12转移到spin column中
    15、重复步骤14,将步骤12中的任何剩余混合物转移到spin column中
    16、将600µL的工作洗涤缓冲液加入与collection tube组装的spin column中,在3300xg下离心1分钟。去除液体,用相同的collection tube重新组装spin column
    17、再次重复步骤17次(即,总共清洗两次)
    18、在cfDNA洗脱前干燥旋转:为了去除任何残留的工作洗涤缓冲液,将旋转柱在13000xg下离心2分钟。丢弃collection tube
    19、将旋转柱从步骤18转移到1.5 mL 离心管中。在旋转柱中加入50µL洗脱缓冲液,室温静置2分钟。将旋转柱与埃彭多夫管一起以400 x g离心1分钟,然后以5800xg.
    20、离心2分钟。为了提高回收率,将洗脱缓冲液转移回旋转柱,室温静置2分钟。400 x g离心1分钟,然后5800xg
    21、离心2分钟。使用NanoDrop检测分离的cfDNA。由于分离的cfDNA浓度低,片段大小小,OD读数和A260与A280的比值可能都不准确。为了准确估计cfDNA,建议使用Qubit或安捷伦生物分析仪的高灵敏度DNA定量试剂盒来进行检测。cfDNA的产量将根据血液样本来源的不同而不同,预计数量在ng范围内。

  • 3

    C)从外泌体中分离DNA。

    1、准备外泌体原液:外泌体从上述方案的A环节获得。外泌体应该存储在1xPBS中,下面进一步的步骤需要500µL的~体积。如果外泌体溶液的体积小于500µL,则使用1xPBS补充到500µL
    2、从步骤1中加入1000µL的DNA结合缓冲液到500µL的外泌体溶液中,旋转10秒钟来混合均匀
    3、将步骤2中约600µL的混合物转移到collection tube组装的spin column中。3300xg离心2分钟。丢弃气流,用相同的collection tube重新组装spin column
    4、重复步骤3,将600µL的剩余混合物从步骤2转移到spin column中
    5、重复步骤4,将任何剩余的混合物从步骤2转移到spin column中
    6、将600µL的工作洗涤缓冲液加入到与收集管组装的旋转柱中,在3300xg下离心1分钟。丢弃流式,用相同的收集管重新组装旋转柱
    7、再次重复步骤7一次(即,总共清洗两次)
    8、在外泌体DNA洗脱前干燥旋转(重要):为了去除任何残留的工作洗涤缓冲液,在13000xg下离心2分钟。丢弃collection tube
    9、将spin column从步骤9转移到1.5 mL离心管中。在旋转柱中加入50µL洗脱缓冲液,室温静置2分钟。将spin column与离心管一起以400 x g离心1分钟,然后以5800xg离心2分钟
    10、为了提高回收率,将洗脱缓冲液转移回spin column,室温静置2分钟。400 x g离心1分钟,然后5800xg.离心2分钟
    11、使用NanoDrop测量测量的cfDNA。由于分离的cfDNA浓度低,片段大小小,OD读数和A260与A280的比值可能都不准确。为了准确估计cfDNA,我们建议使用使用Qubit或安捷伦生物分析仪的高灵敏度DNA分析试剂盒。不同样本的cfDNA产量将根据血液样本的来源而有所不同,预计数量在ng范围内

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