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实验步骤
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标记
根据待分析样品的数量,标记适宜数量的2ml PCR管。这些样品应当包括2%样品输入对照、阳性对照组蛋白H3样品、阴性对照Normal Rabbit IgG样品,和未加入DNA的试管以排除DNA污染;
加样
向每支管中添加2μl相应的DNA样品;
反应混合物制备
按下文所述的步骤制备主反应混合物,配置时多配置两个样本的试剂以弥补分管时的体积损耗。向每支反应管中添加18μl主混合物;
试剂
1 次 PCR 反应所需体积 (18 μl)
无核酸酶的 H2O
12.5 μl
10X PCR 缓冲液
2.0 μl
4mM dNTP 混合物
1.0 μl
5 μM RPL30 引物
2.0 μl
Taq DNA 聚合酶
0.5 μl
启动
启动以下PCR反应程序:
预变性 95℃
5 分钟
变性 95℃
30 秒
退火 62℃
30 秒
延伸 72℃
30 秒
重复步骤 b-d,共循环 34 次。
终末延伸 72℃
5 分钟
实验TIPS
1) 使用带滤嘴的移液器吸头,从而最大限度地减少污染风险。
2) 试剂盒中所含的对照引物专门用于人或小鼠RPL30基因并且可以用于标准PCR或实时荧光定量PCR。如果使用者进行的是另一个物种的 ChIP,则建议使用者针对DNA设计适宜的特异性引物并确定最佳的PCR条件。
3) 建议使用热启动Taq聚合酶以最大限度降低非特异性PCR产物的风险。
4) PCR引物选择至关重要。应当严格遵循以下标准设计引物:
a) 引物长度: 24个核苷酸
b) 最佳 Tm: 60℃
c) 最佳 GC: 50%
d) 扩增子尺寸: 150至200bp(标准PCR);80至160bp(实时荧光定量PCR)