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9.2.2 qPCR操作步骤

| 9.2.3 qPCR数据分析

实验步骤

  • 1
  • 2
  • 3
  • 4
  • 5
  • 1

    准备

    标记适当数量、兼容待用PCR仪型号的PCR管或PCR平板。PCR反应应当包括阳性对照组蛋白H3样品、阴性对照Normal Rabbit IgG样品、监控DNA污染的不含DNA模板的试管和2%输入对照组染色质DNA的连续稀释物(未稀释、1:51:251:125),以生成标准曲线并测定扩增效率

  • 2

    加样

    PCR平板上的每只管或每个孔中添加2 μl相应的DNA样品;

  • 3

    制备

    按下文所述的步骤制备主反应混合物。额外足量配置两个反应的试剂以弥补分管时的体积损失。向每支PCR反应管或每个孔中添加18μl反应混合物。如有必要用铝箔纸盖住平板以避光,并在4°C下最多保存4小时或在-20°C下过夜,直到机器可以使用;

    试剂

    1 次 PCR 反应所需体积 (18 μl)

    无核酸酶的 H2O

    6 μl

    5 μM RPL30 引物

    2 μl

    SimpleChIP® Universal qPCR Master Mix #88989

    10 μl

  • 4

    启动反应程序

    a.预变性:95℃ 3分钟

    b.变性:95℃ 15

    c.退火:60℃ 60

    d.重复步骤bc,共循环40次。

  • 5

    分析

     使用实时PCR仪的自带软件,分析定量PCR结果。或者,可以使用input样品百分数方法和以下所示的公式,手动计算IP效率。采用这种方法,从每次免疫沉淀获得的信号表述为占总input样品染色质的百分比;

     

    输入百分比 = 2% x 2(C[T] 2% 输入样品 – C[T] IP 样品) C[T] = CT = PCR 反应的阈周期

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