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3.1 核内因子染色——调节性T检测为案例

| 4.1 Phosflow——磷酸化蛋白检测的新方法

视频素材来源于JOVE  https://www.jove.com/cn/v/58848/determination-regulatory-t-cell-subsets-murine-thymus-pancreatic
版权归原作者所有

 

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调节性T细胞的主要分类及特点

自然调节T细胞 适应性调节T细胞
nTreg Tr1 Th3 CD8+T
表型 CD4+CD25int-hi, CD127low-dim CD4+CD25- CD4+CD25+from CD25- precursors  CD8+CD25+
其他相关的标志 CTLA4+,GITR+, FoxP3+, CD127dim CD25low-variable,CD45RBlow, FoxP3- CD25low-variable, CD45RBlow, FoxP3+ FoxP3+,CD28-
发挥效应作用的机制 接触抑制;Granzyme B 依赖性,产生TGFβ 通过细胞因子,产生IL-10 通过细胞因子,产生TGFβ 接触抑制;通过细胞因子,产生IFN-γ、IL-6、IL-10
靶细胞 APC & T effector cells T effector cells 未知 APC & T effector cells
体内的作用 抑制自身反应性T细胞 粘膜免疫及自身免疫反应 粘膜免疫及自身免疫反应 抑制自身反应性T细胞
体外扩增 TCR/CD28共刺激及IL-2 CD3, IL-10, Vitamin D CD3, TGFβ CD3

实验步骤

  • 1
  • 2
  • 1

    试剂准备

     配制工作液之前,缓慢颠倒混匀5次以下试剂:BD Pharmingen™ TF Fix/Perm Buffer (4X), TF Diluent Buffer 以及 TF Perm/Wash Buffer (5X); 
    ●  制备1x Fix/Perm 工作液:用TF Diluent Buffer3:1稀释 4x Fix/Perm Buffer 。每个样本通常需要1ml 1x Fix/Perm工作液。(如20个样本需5ml 4x Fix/Perm Buffer 15ml TF Diluent Buffer)。1x Fix/Perm工作液配好后,尽量在1小时之内用完;  
     制备1x Perm/Wash 工作液:用去离子水4:1稀释5x Perm/Wash Buffer,每个样本需要7.5ml 1x Perm/Wash 工作液。如20个样本需30ml 5x Perm/Wash Buffer120ml 去离子水 )。1x Perm/Wash Buffer可在 2-8°C保存一周; 
     胞内染色过程中所有工作液需置于冰上或 2-8°C。 


    buffer准备

    Fix/Permbuffer稀释 Perm/Wash buffer稀释,请参考上面的步


    表面染色

    100ul stain buffer制备单细胞悬液(10E6)CD4-FITC、CD25-PE抗体染色,2-8°C避光孵育20-30分钟设置空白管、补偿管、对照管、样本管


    固定/破膜

    振荡混匀细胞,加入1ml新鲜配制的1XFix/Permbuffer工作液,混匀2-8°度避光孵育40-50分钟

    破膜/清洗

    向已固定破膜的细胞中加入1XPerm/Wash buffer2-8度条件下350g离心6分钟,去上清再加入2ml  1XPerm/Wash buffer,在2-8度条件下350g离心6分钟,去上清再加入2ml  1XPerm/Wash buffer,在2-8度条件下350g离心6分钟,去上清

    核内染色
    80-100ul  的1XPerm/Wash buffer 重悬细胞加入FOXP3-APC标记抗体或非特异性对照,需涡旋振荡10s以充分混匀,2-8度避光孵育40-50分钟

    破膜/清洗

    清洗前轻轻振荡混匀样本加入2ml1XPerm/Wash buffer,在2-8度条件下350g离心6分钟,去上清

  • 2

    Human 外周血Treg染色案例:

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    Flow cytometric analysis of Alexa Fluor®Human PBMC were stained with FITC Anti-Human CD4 (clone RPA-T4, Cat. No. 555346) and PE Anti-Human CD25 (Clone M-A251, Cat. No. 555432)simultaneously. Cells were fixed and permeabilized (see recommended assay procedure) followed by intracellular staining with the AlexaFluor®based on light scattering characteristics of lymphocytes and fluorescence characteristics of CD4+ or CD25+ respectively,shown as either FoxP3 vs CD25 (left panel) or FoxP3 vs CD4 (right panel). Flow cytometry was performed on a BD FACSCalibur™ System.

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