实验步骤
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所需试剂&耗材
化学品和酶 备注 DMEM基础培养基 用于细胞培养的反相对比显微镜 1×PBS 70μm的细胞过滤器,50 ml锥形管 胎牛血清 培养箱设置为37°C,5%二氧化碳 青霉素和链霉素 5毫升锥形管 台盼蓝 50毫升锥形管 ACK裂解缓冲液 100 mm培养皿 AQIX RS-I“即用型”解决方案 BD FACSAria分选流式细胞仪 FCMase组织消化酶 EasySepTM 胶原酶I(LS004196) 无菌手术器械和准备工具 胶原酶II(LS004177) 胶原酶IV(LS004182) 透明质酸酶(LS002592) DNA酶I(LS002139) PI(abs9105) HypoThermol FRS保存溶液 CS10冷冻保存溶液 肾脏处理方法
1.在培养皿中,清除肾组织中粘附的脂肪和外膜;
2.新鲜样品储存在组织保存溶液(AQIX)中;
3.组织块的一部分在HypoThermosol FRS保存溶液中孵育30分钟;
4.补充1ml CS10冷冻保存溶液;
5.在−80°C下储存过夜,然后转移到液氮中;
6.组织块的另一部分放入50毫升离心管中,用穿刺针切成小块,分别称重;
7.获得的样品加入5ml离心管中;
8.3ml PBS洗涤,以300g离心5分钟,然后除去上清液;
9.切割穿孔的样品,并用PBS再次洗涤,丢弃上清液;
10.使用消化酶在37°C下进一步消化粘性细胞团块20分钟;
11.使用DMEM完全培养基停止消化;
12.通过70μm细胞滤网过滤所得细胞悬浮液;
13.以300g离心5分钟,去除上清液;
14.沉淀重悬于DMEM培养基中;FCMase酶浓度
将不同浓度的FCMase(6、7、8和9μl/mg)添加到肾组织样品中,然后在37°C下孵育20分钟。在孵育过程中,每5分钟混合一次样品。
FCMase消化的持续时间
将FCMase消化酶以8μl/mg的浓度添加到肾组织样本中,这意味着将80μl的FCMase添加到一个穿刺组织(10mg)中。随后,将组织样本在37°C下消化10分钟、20分钟和30分钟,并每5分钟混合一次。
胶原酶类型和浓度
通过将126.6、36.2和42.6mg的量分别与15.83、4.53和5.33ml的DMEM高葡萄糖培养基混合,制备8mg/ml的胶原酶I、胶原酶II和胶原酶IV储备溶液。将每种胶原酶以1/8mg/ml的比例添加到肾穿刺样品中,使用以下浓度0.125、0.25、0.5、1、2和4mg/ml,并在37°C下孵育20分钟,同时每5分钟混合一次。
胶原酶组合
使用L9(34)正交表设计了9个胶原酶组合组。所用胶原酶的类型、浓度和配方如表1所示。将DNase I(0.1mg/ml)和透明质酸酶(0.1mg/ml)添加到每个胶原酶组合中,并在37°C下孵育20分钟,每5分钟混合一次。测量细胞计数和活力。使用LiberaseTM和FCMase进行比较。△点击放大图片
操作流程图
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