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1.1.9  植物组织

| 1.1.10 膜蛋白

植物组织蛋白提取操作步骤

该流程是按照Sigma的PE0230试剂盒来进行,此试剂盒包含的组分如下表:

组分 PE0230 20次
Protein Extraction Reagent Type 4 1瓶
1 bottle of powder 配成终体积23ml的溶液
Protease Inhibitor Cocktail 1ml

其他试剂盒中不含的试剂需要自行准备。如果使用其他品牌的试剂盒,可以参考其说明书进行操作。


溶液4需要加15ml的超纯水混匀后工作液才能使用,配成工作液后可以-20°C保存。每次使用之前取适量的溶液4,加入蛋白酶抑制剂,使其浓度到10ul/ml

实验步骤

  • 1
  • 2
  • 3
  • 4
  • 5
  • 6
  • 7
  • 8
  • 9
  • 10
  • 11
  • 12
  • 13
  • 14
  • 1

    研磨

    10-250mg植物组织,在液氮中将组织研磨成粉末;

  • 2

    收集样品

    将磨好的组织粉末转移到2ml的EP管中,此过程快速冰上操作,以最大程度地减少蛋白质降解。

  • 3

    甲醇萃取,去单宁

    加入1.5ml准备好的甲醇溶液,-20°C孵育5min,孵育的过程涡旋混匀一到两次,以免组织沉淀;

  • 4

    离心

    将悬浮液在4°C16,000g离心5min;

  • 5

    收集沉淀

    用移液枪吸掉上清,注意不要打乱沉淀;

  • 6

    重复3-5两次

    重复步骤(3)(4)(5)两次;

  • 7

    丙酮萃取,去核酸

    1.5ml-20°C预冷的丙酮,迅速涡旋混匀样品(15‒30S),然后置于-20°C孵育5min;

  • 8

    离心

    将悬浮液在4°C16,000g离心5min以沉淀蛋白质和植物组织碎片;

  • 9

    收集沉淀

    用移液枪去除上清,注意不要打乱沉淀;

  • 10

    风干

    室温下将颗粒风干(5-10min),以除去残留的丙酮;

  • 11

    称重

    干燥样品后,称重以确定植物组织的重量;

  • 12

    提取

    每mg植物组织加入4ul的试剂盒中的溶液4,通过涡旋充分混匀组织沉淀,室温孵育15min;

  • 13

    取上清

    16,000g 4°C离心30min以沉淀植物组织碎片,提取上清液,不要吸取到沉淀,样品制备完成,制备好样品可以分装保存于-80°C中。

  • 14

    注意事项:

    (1)  组织应是新鲜或者冰冻保存的,如果组织有变黄或者腐烂,则需另取一批新鲜组织进行实验。高纤维组织可能需要长时间的研磨;


    (2)  有些植物组织含有较高酚和单宁,可能需要多次使用甲醇溶液进行去除,最后一次吸掉上清后,将试管倒置在干净的纸巾上,以最大程度的去除甲醇;


    (3)  步骤(12)温度需保持在15-30°C之间,因为温度太高容易导致蛋白的降解,温度太低溶液中的尿素和硫脲会沉淀出来。

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