如果研究对象为细胞色素P450或脂质代谢等,需要把内质网提取出来进行单独研究,则准备好相应的试剂。Sigma的ER0100内质网提取试剂盒适用于从动物软组织和培养的细胞中提取内质网,以下以该试剂盒做一个成分和步骤的讲解。
组分 | ER0100 |
Isotonic Extraction Buffer 5X | 100ml |
Hypotonic Extraction Buffer 10X | 10ml |
Calcium Chloride Solution | 5ml |
OptiPrep Density Gradient Medium | 100ml |
Needle,4 inch, 20 gauge | 1个 |
如果用的是其他品牌的试剂盒,可以参考其说明书进行操作。
实验步骤
- 1
- 2
使用前的准备
(1) 试剂盒中的各种缓冲液保存在4°C下;
(2) Isotonic Extraction Buffer 5X中加入4倍体积的超纯水稀释成1X,Hypotonic Extraction Buffer 10X加入9倍体积的超纯水稀释成1X,两个试剂使用之前需要取适量的缓冲液各自加入蛋白酶抑制剂;
(3) Calcium Chloride Solution试剂盒中的浓度为2.5 M,用超纯水稀释成8 mM CaCl2溶液,每0.032ml的2.5M 溶液加10ml水稀释,终浓度即为8 mM;
(4) 所有试剂和设备在使用之前需要进行预冷。内质网蛋白提取操作步骤
A、从动物软组织中提取线粒体:
(1) 取好的新鲜组织放在培养皿中用10ml预冷的PBS洗涤两次,并轻摇几分钟,去除组织上的血液,洗好的组织放在纸巾上,以吸收多余的液体和血液凝块。然后将组织切成1.5‒2cm的小块,再重复洗涤两次,用纸巾吸干组织上多余的液体并称重;
(2) 用手术刀将组织切成0.3-0.5cm的小块,按每克加3.5ml的1X Isotonic Extraction Buffer,用匀浆机把组织充分匀浆,整个过程需要在冰上进行,匀浆完之后如果仪器上沾有较多的组织,可以用0.5ml的1X Isotonic Extraction Buffer将冲洗下来;
(3) 匀浆4°C下1,000g离心10min,小心吸除漂浮的薄薄脂质层,之后将上清液移至另一个离心管中,丢弃沉淀;
(4) 4°C下12,000g离心15min,通过抽吸小心去除薄薄的漂浮脂质层,将上清液转移到另一个离心管中,弃去沉淀。上清液部分是线粒体等微粒体部分(PMF),是微粒体的来源;
(5) 在不断搅拌的时候,再向PMF中逐滴添加相当于PMF 7.5倍体积的8 mM的氯化钙溶液,此时CaCl2的终浓度为7 mM,在4°C下再搅拌15min;
(6) 4°C以8000g离心10min,富集的RER微粒体将在沉淀中,除去上清液,并将沉淀物悬浮在1X Isotonic Extraction Buffer,按每g原始组织加0.3 ml缓冲液充分混匀,收集的组分则为微粒体溶液;接下来采用密度梯度离心法4°C条件下分离内质网。
(7) 用60% OptiPrep Density Gradient Medium稀释微粒体至终浓度为20%,按每毫升样品添加0.5 ml60% OptiPrep Density Gradi-ent Medium,充分混匀;
(8) 取一个8ml的超速离心管,并在底部放置2ml的30% OptiPrep Density Gradient Medium;
(9) 在巴斯德移液器的帮助下,通过将含20% OptiPrep Density Gradient Medium的样品以液滴小心地滴在靠近底层的管壁上让它自己沿着壁流下去,最多加1.5 ml样品在30%溶液的上部;
(10) 借助巴斯德移液器,小心地将4ml的15%OptiPrep Density Gradient Medium溶液铺在样品上,滴在靠近底层的管壁上让它自己沿着壁流下去;
(11) 封闭试管,在离心机上配平好,4°C 150,000g离心3h;
(12) 离心结束后,用胶带将校准刻度尺贴在试管的侧面,使上弯月面与校准线重合,用4英寸钝头针头和适当尺寸的注射器从梯度的顶部向下抽取0.5ml的馏分,将针头的末端插入第一条校准线的底部,并取出等分试样,记录抽取的体积,将馏分转移到微量离心管中;
(13) 将针移至下一条校准线的底部,以相同的方式继续抽取馏分,将每个馏分转移到新的微量离心管,中间层为含有内质网的组分,保存标记装有样品的试管,进行接下来的分析。
B、从培养的细胞中提取内质网(细胞数量> 2 x 108个):
(1) 收集培养的细胞,将细胞在600g下离心5min,丢弃上清;
(2) 加入10倍体积的PBS对细胞进行洗涤并离心;
(3) 将细胞悬浮在相当于细胞沉淀3倍体积的1X Hypotonic Extraction Buffer equivalent 中,并在4°C下孵育20min,使细胞充分膨胀破裂;
(4) 600g下离心5min,然后吸掉上清,保留沉淀;
(5) 加入大约跟沉淀等体积的1XIsotonic Extraction Buffer equivalent ,将样品转移至7 ml Dounce均质器中;
(6) 用Dounce匀浆器充分使细胞完全破碎,接下来采用密度梯度离心法4°C条件下分离内质网;
(7) 用60% OptiPrep Density Gradient Medium稀释微粒体至终浓度为20%,按每毫升样品添加0.5 ml 60% OptiPrep Density Gradi-ent Medium,充分混匀;
(8) 取一个8ml的超速离心管,并在底部放置2ml的30% OptiPrep Density Gradient Medium;
(9) 在巴斯德移液器的帮助下,通过将含20% OptiPrep Density Gradient Medium的样品以液滴小心地滴在靠近底层的管壁上让它自己沿着壁流下去,最多加1.5ml样品在30%溶液的上部;
(10) 借助巴斯德移液器,小心地将4ml的15%OptiPrep Density Gradient Medium溶液铺在样品上,滴在靠近底层的管壁上让它自己沿着壁流下去;
(11) 封闭试管,在离心机上配平好,4°C 150,000g离心3h;
(12) 离心结束后,用胶带将校准刻度尺贴在试管的侧面,使上弯月面与校准线重合,用4英寸钝头针头和适当尺寸的注射器从梯度的顶部向下抽取0.5ml的馏分,将针头的末端插入第一条校准线的底部,并取出等分试样,记录抽取的体积,将馏分转移到微量离心管中;
(13) 将针移至下一条校准线的底部,以相同的方式继续抽取馏分,将每个馏分转移到新的微量离心管,中间层为含有内质网的组分, 保存标记装有样品的试管,进行接下来的分析。